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        神经胶质瘤细胞;H4实验报告
        点击次数  :137 更新时间:2024-11-27

        神经胶质瘤细胞 ;H4实验报告:

        一、分离与培养 :

        1 、无菌条件下 ,取出1-3d 龄SD大鼠心房组织,然后用PBS将此组织块清洗2次,将成1mm3左右大小;

        2、往组织块中加入4 mL酶消化液(0.1% 和0.1% I型胶原酶),混悬10s,置37℃条件下消化10min,之后用滴管吹打制成单细胞悬液 ,自然沉淀并收集上清,用含10% FBS培养基终止消化后4℃放置 ;

        3、剩下的组织再加入3~4mL酶消化液,混悬10s,置37℃消化10 min后,按上述方法收集上清并终止消化后4℃放置 ,重复此步骤2-3次,直至组织*被消化 ;

        4、用200目不锈钢筛网过滤细胞消化液 ,1200r/min 离心10min,弃去上清,沉淀细胞用含有10% FBS DMEM/F12培养基混悬,接种于25cm2培养瓶,放置于37℃ ,5%CO2 培养箱中培养;

        5、差速贴壁1h后,吸出培养基 ,按实验需要接种于6孔板中继续培养;

        二、免疫荧光鉴定 :

        1、待心房肌细胞生长至80%融合时 ,弃去培养基,用温育的PBS冲洗细胞2次,每次10min,然后用4%多聚甲醛在室温条件下固定细胞15min;

        2、PBS冲洗细胞2次 ,每次10min,然后在4℃条件下,用0.1%Triton X-100透膜15min ;

        3、PBS冲洗细胞2次,每次10min ,然后在室温条件下,用4% BSA封闭细胞30min ;

        4、按1: 100的比例稀释α-actin一抗,然后将其放在4℃冰箱中孵育细胞过夜 ;

        5 、PBS冲洗细胞3次 ,每次10min,按1:150的比例稀释抗α-actin的二抗, 37℃条件下放置1h;

        6、用PBS冲洗3次,每次10min ,在倒置荧光显微镜下观察图像并拍照 。


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